动物实验

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常用实验动物的处死方法
发布时间:2010-07-14     来源:     作者:

(一)大鼠和小鼠

1脊椎脱臼法:右手抓住尾巴将动物放在鼠笼盖或粗糙的表面上向后拉,用左手拇指和食指用力向下按住鼠头,使颈椎脱臼(脊髓与脑髓拉断),动物立即死亡。

2断头法:此法适用于鼠类小动物。用剪刀在颈部将鼠头剪断,并使颈部对准容器,以免血液四溅。由于脑脊髓离断且大量出血,动物立即死亡。

3击打法:此法适用于大鼠、家兔等。抓住动物尾部,提起,用力摔击头部,或用木捶用力捶其后脑部,动物痉挛后即处死。

4急性失血法:

常剪断动物的股动脉,放血致死。如果正在做手术性或解剖性实验,可剪断颈动脉,腹主动脉或剪破心脏放血。可采用摘眼球法,右手取一眼科弯镊,在鼠右或左侧眼球根部将眼球摘去,并将鼠倒置;头向下,大量失血而致死。

5化学药物致死法:在一密闭容器内,预先放有浸有全身麻醉作用的乙醚或氯仿的棉花,将动物投入容器内,使动物吸入麻醉药而致死。也可皮下注射士的宁(马钱子碱),注射量为小鼠0.76~2.0mg/kg,大鼠为3.0~3.5mg/kg。

(二)狗、猫、兔、豚鼠

1空气栓塞法

此法适用于较大动物的处死。向动物静脉内注射注入一定量的空气使之发生空气栓塞,形成严重的血液循环障碍而死。兔、猫用此法处死需注入20~40ml空气,犬致死的空气剂量为80~150ml。一般注如入后动物能很快死亡。本法的优点是处死方法简单、迅速。缺点是由于动物死于急性循环衰竭,各脏器淤血十分明显。

2急性失血法

先使动物麻醉、暴露股三角区或腹腔,再切断股动脉或腹主动脉,迅速放血。放血时可用湿纱布擦,或用少量自来水冲洗切口,以保持其畅通,动物在3~5分钟内即可死亡。采用此法动物十分安静,对脏器无损害,但器官贫血比较明显。

小鼠等小动物可采用颈总动脉大量失血而致死的方法。犬等大型动物要先麻醉后放血,要使放血的切口保持通畅,一般在股三角区横切约lOcm的切口,切断股动、静脉,便大量失血而死。

3破坏延脑法

对家兔可用木捶用力捶其后脑部,损坏延脑,动物痉挛后死亡。

4化学药物致死法

(1)静脉注射10%氯化钾(kCl)溶液,使动物心肌松弛,失去收缩能力,心脏发生急性扩大致心跳停止而死亡。成年兔由兔耳缘静脉注入10%氯化钾(kCl)溶液5~10ml/只,狗由狗前肢或后肢皮下静脉注入20~30ml/只,即可致死。

(2)静脉注射10%福尔马林溶液,使血液内蛋白凝固,动物由于全身血液循环严重障碍和缺氧而死。狗用20ml/只,即可致死。

(3)皮下注射的士宁致死:用量为:豚鼠为3.0~4.4mg/kg,家兔为0.5~1.Omg/kg,犬为0/3~0.42mg/kg。猫1.0~2.0mg/kg,大白鼠3.0~3.5mg/kg,小白鼠0.76~2.0mg/kg。

如果动物或其组织要送检,必须注明处死方法。

(三)蛙 类

常用金属探针插入枕骨大孔,破坏脑脊髓的方法处死。将蛙用湿布包住,露出头部,左手执蛙,并用食指按压其头部前端,拇指按压背部,使头前俯;右手持探针由凹陷处垂直刺入,刺破皮肤即入枕骨大孔。这时将探针尖端转向头方,向前深入颅腔,然后向各方搅动,以捣毁脑组织。再把探针由枕骨大孔刺入并转向尾方,刺入椎管,以破坏脊髓。脑和脊髓是否完全破坏,可检查动物四肢肌肉的紧张性是否完全消失。拔出探针后,用一小干棉球将针孔堵住,以防止出血。操作过程中要防止毒腺分泌物射入实验者眼内。如被射入时,则需立即用生理盐水冲洗眼睛。


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